Introducción: La angiogénesis es la ramificación de capilares preexistentes, fundamental en el desarrollo y mantención de estructuras corporales, encontrándose regulada por la proporción entre factores pro y antiangiogénicos. En las últimas décadas se ha usado el fluido celémico de lombriz E. Foetida (EF) como fuente de compuestos biológicamente activos. La membrana alantocoriónica (MAC) de pollo es un modelo muy utilizado para experimentar angiogénesis in vivo y mediante el cual estudiamos la eventual modificación de este proceso por parte del sobrenadante de EF.
Metodología: Se obtuvo sobrenadante de EF mediante la centrifugación a 1000 G y 10000 G del homogenizado de lombriz. Para cada velocidad de centrifugación se realizaron tres diluciones (5%, 1% y 0.1% v/v) procediéndose a la instilación de éstas sobre la MAC de huevos previamente preparados (n=6 c/grupo). Como control se utilizaron huevos instilados con suero fisiológico (n=3). Tras 48 horas de incubación post instilación, se extrajo un trozo de MAC de cada huevo, posterior preparación de muestras histológicas y conteo de vasos sanguíneos presentes mediante microscopía.
Resultados: Los resultados demuestran que el número de vasos sanguíneos se reduce significativamente con el sobrenadante preparado a 1000 G, en sus tres diluciones (p < 0,05), no modificándose con las tres diluciones del sobrenadante preparado a 10000 G.
Conclusiones: La existencia de algún compuesto presente a 1000 G, pero sedimentado a 10000 G de centrifugación, sería responsable del efecto antiangiogénico del sobrenadante de lombriz, que podría usarse como fuente sencilla de sustancias para tratar patologías donde el proceso angiogénico se encuentra aumentado, como cáncer o artritis reumatoide.
(1) Folkman J. Fighting cancer by attacking its blood supply. Sci Am 1996; 275(3): 150-154.
(2) Carmeliet P, Jain RK. Angiogenesis in cancer and other diseases. Nature 2000; 407(6801): 249-257.
(3) Coorer EL, Hrzenjak TM, Grdisa M. Alternative sources of fibrinolytic, anticoagulative, antimicrobial and anticancer molecules. Int J Immunopathol Pharmacol 2004; 17(3): 237-244.
(4) Hrzenjak T, Hrzenjak M, Kasuba V, Efenberger-Marinculic P, Levanat S. A new source of biologically active compounds-earthworm tissue (E. foetida, Lumbricus rubelus). Comp Biochem Physiol Comp Physiol 1992; 102(3): 441-447.
(5) Bilej M, Brys L, Beschin A, Lucas R, Vercauteren E, Hasunova R, De Baetselier P. Identification of a cytolytic protein in the coelomic fluid of E. foetida earthworms. Immunol Lett 1995; 45(1-2): 123-128.
(6) Grdisa M, Porovic M, Hrzenjak T. Glycolipoprotein extrac (G90) from earthworm E. Foetida exerts some antioxidative activity. Comp Biochem Physiol A Mol Integr Physiol 2001; 128(4): 821-825.
(7) Popovic M, Hrcenjak TM, Basic T, Kos J, Grdisa M. Effect of earthworm (G-90) extract on formation and lysis of clots originated from venous blood of dogs with cardiopathies and with malignant tumors. Pathol Oncol Res 2001; 7(3): 197-202.
(8) Liu YQ, Sun ZJ, Wang C, Li SJ, Liu YZ. Purification of a novel antibacterial short peptide in earthworm E. foetida. Acta Biochim Biophys Sin (Shanghai) 2004; 36(4): 297-302.
(9) Engelmann P, Kiss J, Csoncer V, Cooper EL, Nemeth P. Earthworm leukocytes kill HeLa, HEp-2, PC-12 and PA317 cells in vitro. J Biochem Biophys Methods 2004; 61(1-2): 215-227.
(10) Lemus D, Dabancens A, Illanes J. Antiangiogenic effect of betamethasone on the chick CAM stimulated by TA3 tumor supernatant. Biol Res 2001; 34(3-4): 227-236.